Proteínas quinases são importantes alvos de estudo devido atuarem como reguladores diretos do ciclo celular. A progressão do ciclo de divisão celular é conduzida por ciclinas, que ligam e ativam seus parceiros catalíticos, as quinases dependentes de ciclina (CDKs). As CDKs compreendem uma família de proteínas que podem ser subdivididas em dois grupos funcionais majoritários baseados na sua função no ciclo celular e/ou controle transcricional. Os complexos heterodiméricos específicos de CDK-ciclina fosforilam diversas proteínas celulares, as quais promovem a entrada no ciclo celular, a regulação da síntese de DNA e a segregação dos cromossomos recém-duplicados durante a mitose. A ciclina D3 tem como função atuar na fase G1 como subunidade reguladora de CDK4 e CDK6, e também como parceiro da CDK11p⁵⁸ na fase G2/M durante a progressão do ciclo celular. A superexpressão da ciclina D3 se correlaciona com o aumento da proliferação celular e crescimento tumoral, além de ser capaz de inibir a atividade de transativação do receptor de andrógenos. O objetivo do presente estudo é a superexpressão da ciclina D3 utilizando o sistema de expressão bacteriano (Escherichia coli) a fim de obter a proteina purificada e com pureza adequada para a realização de ensaios de caracterização estrutural e de atividade quinase do complexo CDK11Δ-ciclinaD3. A utilização de diferentes tipos de vetores permitiu obter a proteina de interesse por meio de processo de reenovelamento e de forma nativa. Os resultados obtidos para a expressão em ambos os vetores, produziram proteinas com mais de 95% de pureza. Os ensaios de caracterização por espectroscopia de dicroísmo circular (CD) da proteína ciclina D3 na forma nativa (solúvel) apresentou um padrão muito parecido de estruturas secundárias por CD quando comparado ao resultado da proteína reenovelada, com cerca de 39% de hélices α e 15% de fitas β. Por espectroscopia de emissão de fluorescência, foi demonstrado que a proteína é estável frente ao agente caotrópico ureia, porém instável na presença de concentrações crescentes de cloreto de guanidina. O ensaio de atividade quinase do complexo CDK11Δ-ciclinaD3 permitiu assegurar a conformaçao correta das proteinas recombinates obtidas em ambos os vetores. Esses dados validam o protocolo de reenovelamento, servindo de base para estudos futuros envolvendo a produção de proteínas recombinantes e para estudos envolvendo possíveis inibidores para este complexo.

Protein kinases are important targets for study due they act as direct regulators of the cell cycle. The progression of the cell division cycle is driven by cyclins, which bind and activate their catalytic partners, cyclin-dependent kinases (CDKs). CDKs comprise a family of proteins that can be subdivided into two major functional groups based on their function in the cell cycle and / or transcriptional control. The CDK- cyclin specific heterodimeric complexes phosphorylate several cellular proteins, which promote entry into the cell cycle, regulation of DNA synthesis and segregation of newly duplicated chromosomes during mitosis. Cyclin D3 has the function of acting in phase G1 as a regulatory subunit of CDK4 and CDK6, and also as a partner of CDK11p⁵⁸ in phase G2 / M during the progression of the cell cycle. Overexpression of cyclin D3 correlates with increased cell proliferation and tumor growth, in addition to being able to inhibit the androgen receptor transactivation activity. The aim of the present study is to overexpress cyclin D3 using the bacterial expression system (Escherichia coli) in order to obtain the purified protein with adequate purity for structural characterization and kinase activity of the CDK11Δ-cyclinD3 complex. The use of different vectors types allowed obtaining the interest protein of through a refolding process and in a native way. The results obtained for the expression in both vectors, produced proteins with more than 95% of purity. The result of the circular dichroism (CD) spectroscopy characterization assays of the cyclin D3 protein in the native (soluble) form showed a very similar pattern of secondary structures per CD when compared to the result of the refolded protein, with about 39% of α helices and 15% β-strands. By fluorescence emission spectroscopy, it was shown that the protein is stable against the chaotropic agent urea, but unstable in the presence of increasing concentrations of guanidine chloride. The kinase activity assay of the CDK11Δ-cyclinD3 complex allowed to ensure the correct conformation of the recombinant proteins obtained in both vectors. These data validate the refolding protocol, serving as a basis for future studies involving the production of recombinant proteins and for studies involving possible inhibitors for this complex.