No epitélio do intestino médio de S. frugiperda encontra-se 90% da atividade de trealase solúvel. A trealase solúvel foi purificada até a homogeneidade por uma série de passos cromatográficos. A enzima possui um sítio hidrofóbico adjacente ao sítio ativo. Mudanças conformacionais aparentemente ocorrem quando metil-a-glicosídeo liga-se ao sítio ativo. A trealase solúvel é inibida competitivamente por amigdalina (K_i=0,21 mM), prunasina (K_i=0,92 mM), mandelonitrila (K_i = 1,14 mM), metil-α-glicosídeo (K_i=89 mM), metil-α-manosídeo (K_i=6,2 mM )e salicina (K_i= 19 mM). Florizina é um inibidor acompetitivo hiperbólico da trealase solúvel (K_i=0,087 mM, α =β =0,35) e seu aglicone floretina é um inibidor não competitivo (K_i=0,029 mM). Tris e mandelonitrila ligam-se a regiões diferentes da enzima enquanto mandelonitrila e floretina não podem ligar-se concomitantemente à enzima. Os pKs da enzima livre (pKe) e do complexo enzima substrato (pKes) foram determinados a partir de valores de K_m e V_máx/K_m obtidos em vários pHs. Os valores encontrados foram: pKe₁=4,47; pKe₂=8,0l ; pKes₁=4,83; pKes₂=7,59. A trealase solúvel não perde a atividade quando incubada com reagentes que modificam grupos sufidrila, thiol e fenol. Com modificador de grupo imidazol, a enzima perde 60% da atividade somente na presença de metil-α-glucosídeo (inibidor competitivo da trealase). Essa modificação é protegida por trealose, indicando a presença de uma Histidina não essencial para catálise. Modificadores de grupo carboxila e guanidino inativam a enzima, com pKs de, respectivamente, 4,87 e 7,84. a similaridade desses pKs com os determinados cineticamente sugere que os resíduos envolvidos em catálise são uma arginina e um asparto ou glutamato. β-glicosídeos tóxicos produzidos por plantas e seus aglicones inibem trealoses presentes em diferentes órgãos de várias ordens de insetos. Essa inibição foi menor em insetos que se alimentam somente de vegetais, provavelmente devido a uma adaptação desses organismos.

The epithelium of S. frugiperda midgut has a trehalase activity that is mainly soluble (90%). The soluble trehalase was purified by several chromatographic steps. The enzyme has an hydrophobic site near the active site. Conformational changes apparently occur in the enzyme when methyl-α-glucoside binds to the active site. Trehalase has a K_m=0.37 mM and is a competitively inhibited by methyl-α-glucoside (K_i=89 mM); methyl-α-mannosideo (K_i=6.2 mM); amygdalin (K_i=0.21); prunasin (K_i=0.92 mM); mandelonitrile (K_i=l.14 mM); Tris (K_i=0.55 mM) and salicin (K_i=l9 mM). Phlorizin is an hyperbolic acompetitive inhibitor (α=β=0.35; K_i=0.0087 mM), whereas its aglycon, phloretin, is a non-competitive inhibitor (K_i=0.029 mM). Tris and mandelonitrile bind at the same region in the active site. On the other hand, mandelonitrile and phloretin cannot be bound to the enzyme at the same time. Enzyme pKs (pKe) and enzyme substrate pKs (pKes) were determined from Km and V_max/K_m values obtained at different pHs. The values are: pKe₁=4.47; pKe₂=8.0l ; pKes₁=4.83; pKes₂=7.59. Trehalase is not inactivated when incubated with compounds that react with thiol, imidazole or phenol groups. Trealase lose 60% of its activity in the presence of methyl-α-glucoside (acompetitive inhibitor) plus a compound that reacts with imidazole groups. This inactivation is decreased by trehalose, indicating that there is a non-essential histidine in the active site substances that react with carboxyl guanidine groups inactivate the enzyme. The modified groups have pH of respectively, 4.87 and 7.84. The resemblance of these pKs with the one determined from K_m and V_max values suggest that the prototropic groups of the enzyme are in residues of arginine and aspartic acid or glutamic acid. Toxic β-glucosides from plants and their aglycons inhibit trealase from different organs of insects from several orders. This inhibition is lower in herbivorous insects, possibly due to their adaptation in ingesting vegetal tissues.